2,43
1,65
1,98
0,73
1,88
1,81
2,43
2.2 Standardní látky použité v kalibrační křivce distribuce relativní molekulové hmotnosti: inzulin, mykopeptidy, glycin-glycin-tyrosin-arginin, glycin-glycin-glycin
3 Přístroje a vybavení
23.2
21,4
22.2
16.1
22.3
20,8
23,9
27,5
Celkově je podíl aminokyselin v produktech Sustar vyšší než v produktech Zinpro.
Část 8 Účinky užívání
Vliv různých zdrojů stopových prvků na produkční výkonnost a kvalitu vajec nosnic v pozdním období snášky
Výrobní proces
Cílená chelatační technologie
Technologie smykové emulgace
Technologie tlakového stříkání a sušení
Chladicí a odvlhčovací technologie
Pokročilá technologie pro řízení prostředí
Dodatek A: Metody pro stanovení relativní distribuce molekulových hmotností peptidů
Přijetí normy: GB/T 22492-2008
1 Princip testu:
Stanovení bylo provedeno pomocí vysokoúčinné gelové filtrační chromatografie. To znamená, že se jako stacionární fáze použilo porézní plnivo, na základě rozdílu v relativní molekulové hmotnosti separačních složek vzorku, detekovaného při peptidové vazbě ultrafialové absorpční vlnové délce 220 nm, a pomocí specializovaného softwaru pro zpracování dat pro stanovení distribuce relativní molekulové hmotnosti gelovou filtrační chromatografií (tj. softwaru GPC). Chromatogramy a jejich data byly zpracovány a vypočítány tak, aby se získala relativní molekulová hmotnost sójového peptidu a distribuční rozmezí.
2. Činidla
Experimentální voda by měla splňovat specifikaci sekundární vody v GB/T6682, použitá činidla, s výjimkou zvláštních ustanovení, musí být analyticky čistá.
2.1 Mezi činidla patří acetonitril (chromatograficky čistý), kyselina trifluoroctová (chromatograficky čistá),
2.2 Standardní látky použité v kalibrační křivce distribuce relativní molekulové hmotnosti: inzulin, mykopeptidy, glycin-glycin-tyrosin-arginin, glycin-glycin-glycin
3 Přístroje a vybavení
3.1 Vysoce účinný kapalinový chromatograf (HPLC): chromatografická pracovní stanice nebo integrátor s UV detektorem a softwarem pro zpracování dat GPC.
3.2 Jednotka pro vakuovou filtraci a odplyňování mobilní fáze.
3.3 Elektronická váha: odstupňovaná hodnota 0,000 1 g.
4 kroky obsluhy
4.1 Chromatografické podmínky a experimenty s adaptací systému (referenční podmínky)
- 4.1.1 Chromatografická kolona: TSKgelG2000swxl300 mm×7,8 mm (vnitřní průměr) nebo jiné gelové kolony stejného typu s podobným výkonem vhodné pro stanovení proteinů a peptidů.
- 4.1.2 Mobilní fáze: Acetonitril + voda + kyselina trifluoroctová = 20 + 80 + 0,1.
- 4.1.3 Detekční vlnová délka: 220 nm.
- 4.1.4 Průtok: 0,5 ml/min.
- 4.1.5 Doba detekce: 30 minut.
- 4.1.6 Objem vstřikovaného vzorku: 20 μl.
- 4.1.7 Teplota kolony: pokojová teplota.
- 4.1.8 Aby chromatografický systém splňoval detekční požadavky, bylo stanoveno, že za výše uvedených chromatografických podmínek účinnost gelové chromatografické kolony, tj. teoretický počet ploten (N), nesmí být menší než 10 000, vypočteno na základě píků tripeptidového standardu (glycin-glycin-glycin).
- 4.2 Vytvoření standardních křivek relativní molekulové hmotnosti
- Výše uvedené roztoky standardních peptidů s různou relativní molekulovou hmotností a hmotnostní koncentrací 1 mg/ml byly připraveny metodou mobilní fázové analýzy, smíchány v určitém poměru a poté přefiltrovány přes membránu z organické fáze s velikostí pórů 0,2 μm až 0,5 μm a vstříknuty do vzorku. Následně byly získány chromatogramy standardů. Kalibrační křivky relativní molekulové hmotnosti a jejich rovnice byly získány vynesením logaritmu relativní molekulové hmotnosti v závislosti na retenčním čase nebo lineární regresí.
4.3 Zpracování vzorku
Do 10ml odměrné baňky se přesně naváží 10 mg vzorku, přidá se trochu mobilní fáze, vzorek se třepe ultrazvukem po dobu 10 minut, aby se zcela rozpustil a promísil. Vzorek se zředí mobilní fází po váze a poté se přefiltruje přes membránu z organické fáze s velikostí pórů 0,2 μm až 0,5 μm. Filtrát se analyzuje dle chromatografických podmínek v bodě A.4.1.
- 5. Výpočet relativní distribuce molekulových hmotností
- Po analýze roztoku vzorku připraveného v bodě 4.3 za chromatografických podmínek podle bodu 4.1 lze relativní molekulovou hmotnost vzorku a jeho distribuční rozsah získat dosazením chromatografických dat vzorku do kalibrační křivky 4.2 pomocí softwaru pro zpracování dat GPC. Distribuci relativních molekulových hmotností různých peptidů lze vypočítat metodou normalizace plochy píku podle vzorce: X = A / A celkem × 100
- Ve vzorci: X - Hmotnostní podíl peptidu s relativní molekulovou hmotností z celkového peptidu ve vzorku, %;
- A - Plocha píku peptidu s relativní molekulovou hmotností;
- Celkem A - součet ploch píků každého peptidu s relativní molekulovou hmotností, vypočtený na jedno desetinné místo.
- 6 Opakovatelnost
- Absolutní rozdíl mezi dvěma nezávislými stanoveními získanými za podmínek opakovatelnosti nesmí překročit 15 % aritmetického průměru obou stanovení.
- Dodatek B: Metody pro stanovení volných aminokyselin
- Přijetí normy: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Činidla a materiály
- Ledová kyselina octová: analyticky čistá
- Kyselina chloristá: 0,0500 mol/l
- Indikátor: 0,1% krystalická violeť (ledová kyselina octová)
- 2. Stanovení volných aminokyselin
Vzorky byly sušeny při teplotě 80 °C po dobu 1 hodiny.
Vzorek umístěte do suché nádoby, aby přirozeně vychladl na pokojovou teplotu nebo na použitelnou teplotu.Do suché Erlenmeyerovy baňky o objemu 250 ml navažte přibližně 0,1 g vzorku (s přesností na 0,001 g).Rychle přejděte k dalšímu kroku, abyste zabránili absorpci okolní vlhkosti vzorkem.Přidejte 25 ml ledové kyseliny octové a dobře míchejte po dobu maximálně 5 minut.Přidejte 2 kapky indikátoru krystalové violetiTitrujte standardním titračním roztokem kyseliny chloristé o koncentraci 0,0500 mol/l (±0,001), dokud se roztok nezmění z fialové na koncový bod.
Zaznamenejte objem spotřebovaného standardního roztoku.
- Současně proveďte slepý pokus.
- 3. Výpočet a výsledky
- Obsah volných aminokyselin X v činidle se vyjadřuje jako hmotnostní zlomek (%) a vypočítá se podle vzorce: X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100 %, ve vzorci:
- C - Koncentrace standardního roztoku kyseliny chloristé v molech na litr (mol/l)
- V1 - Objem použitý k titraci vzorků standardním roztokem kyseliny chloristé v mililitrech (ml).
- Vo - Objem použitý pro titrační slepý pokus se standardním roztokem kyseliny chloristé v mililitrech (ml);
M - Hmotnost vzorku v gramech (g).
| 0,1445: Průměrná hmotnost aminokyselin odpovídající 1,00 ml standardního roztoku kyseliny chloristé [c (HClO4) = 1,000 mol/l]. | 4.2.3 Standardní titrační roztok síranu ceričitého: koncentrace c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/l, připravený dle GB/T601. | |
| Přijetí norem: Q/70920556 71-2024 | 1. Princip stanovení (příklad Fe) | Komplexy aminokyselin a železa mají velmi nízkou rozpustnost v bezvodém ethanolu a volné kovové ionty jsou rozpustné v bezvodém ethanolu. Rozdíl v rozpustnosti mezi těmito dvěma látkami v bezvodém ethanolu byl použit k určení chelatační rychlosti komplexů aminokyselin a železa. |
| Ve vzorci: V1 - objem standardního roztoku síranu ceričitého spotřebovaného na titraci testovaného roztoku, ml; | Bezvodý ethanol; zbytek je stejný jako v bodě 4.5.2 v normě GB/T 27983-2011. | 3. Kroky analýzy |
| Proveďte dva paralelní pokusy. Zvažte 0,1 g vzorku sušeného při 103 ± 2 °C po dobu 1 hodiny s přesností na 0,0001 g, přidejte 100 ml bezvodého ethanolu k rozpuštění, přefiltrujte, zbytek na filtru promyjte alespoň třikrát 100 ml bezvodého ethanolu, poté zbytek převeďte do 250ml Erlenmeyerovy baňky, přidejte 10 ml roztoku kyseliny sírové podle bodu 4.5.3 v GB/T27983-2011 a poté proveďte následující kroky podle bodu 4.5.3 „Zahřejte k rozpuštění a poté nechte vychladnout“ v GB/T27983-2011. Současně proveďte slepý pokus. | 4. Stanovení celkového obsahu železa | 4.1 Princip určení je stejný jako v bodě 4.4.1 v GB/T 21996-2008. |
4.2. Činidla a roztoky
| 4.2.1 Směs kyselin: Do 700 ml vody přidejte 150 ml kyseliny sírové a 150 ml kyseliny fosforečné a dobře promíchejte. | 4.2.2 Indikátorový roztok difenylaminsulfonátu sodného: 5 g/l, připravený dle GB/T603. | 4.2.3 Standardní titrační roztok síranu ceričitého: koncentrace c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/l, připravený dle GB/T601. | |
| 4.3 Kroky analýzy | Proveďte dva paralelní pokusy. Navažte 0,1 g vzorku s přesností na 0,20001 g, umístěte do 250ml kuželové baňky, přidejte 10 ml směsi kyselin, po rozpuštění přidejte 30 ml vody a 4 kapky indikátorového roztoku dianilinsulfonátu sodného a poté proveďte následující kroky podle bodu 4.4.2 v GB/T21996-2008. Současně proveďte slepý pokus. | 4.4 Reprezentace výsledků | Celkový obsah železa X1 v aminokyselinových komplexech železa vyjádřený hmotnostním podílem železa, hodnota vyjádřená v %, byl vypočítán podle vzorce (1): |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - standardní roztok síranu ceričitého spotřebovaný na titraci slepého roztoku, ml; | V0 - standardní roztok síranu ceričitého spotřebovaný na titraci slepého roztoku, ml; | C - Skutečná koncentrace standardního roztoku síranu ceričitého, mol/l5. Výpočet obsahu železa v chelátechObsah železa X2 v chelátu vyjádřený jako hmotnostní podíl železa, vyjádřený v %, byl vypočítán podle vzorce: x2 = ((V1-V2) × C × 0,05585)/m1 × 100 |
| Ve vzorci: V1 - objem standardního roztoku síranu ceričitého spotřebovaného na titraci testovaného roztoku, ml; | V2 - standardní roztok síranu ceričitého spotřebovaný na titraci slepého roztoku, ml;nom1 - Hmotnost vzorku, g. Za výsledek stanovení se vezme aritmetický průměr výsledků paralelního stanovení, přičemž absolutní rozdíl výsledků paralelního stanovení není větší než 0,3 %. | 0,05585 - hmotnost železnatého železa vyjádřená v gramech, což odpovídá 1,00 ml standardního roztoku síranu ceričitého C[Ce(SO4)2.4H20] = 1,000 mol/l.nom1 - Hmotnost vzorku, g. Za výsledek stanovení se vezme aritmetický průměr výsledků paralelního stanovení, přičemž absolutní rozdíl výsledků paralelního stanovení není větší než 0,3 %. | 6. Výpočet chelatační rychlostiChelatační rychlost X3, hodnota vyjádřená v %, X3 = X2/X1 × 100Dodatek C: Metody pro stanovení chelatační rychlosti přípravku Zinpro |
Přijetí normy: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Činidla a materiály
a) Ledová kyselina octová: analyticky čistá; b) Kyselina chloristá: 0,0500 mol/l; c) Indikátor: 0,1% krystalická violeť (ledová kyselina octová)
2. Stanovení volných aminokyselin
2.1 Vzorky byly sušeny při 80 °C po dobu 1 hodiny.
2.2 Vzorek umístěte do suché nádoby, aby přirozeně vychladl na pokojovou teplotu nebo na použitelnou teplotu.
2.3 Do suché Erlenmeyerovy baňky o objemu 250 ml navažte přibližně 0,1 g vzorku (s přesností na 0,001 g).
2.4 Rychle pokračujte k dalšímu kroku, abyste zabránili absorpci okolní vlhkosti vzorkem.
2.5 Přidejte 25 ml ledové kyseliny octové a dobře míchejte po dobu maximálně 5 minut.
2.6 Přidejte 2 kapky indikátoru krystalové violeti.
2.7 Titrujte standardním titračním roztokem kyseliny chloristé o koncentraci 0,0500 mol/l (±0,001), dokud se barva roztoku nezmění z fialové na zelenou po dobu 15 s, aniž by se na konci titrace změnila barva.
2.8 Zaznamenejte objem spotřebovaného standardního roztoku.
2.9 Současně proveďte slepý pokus.
- 3. Výpočet a výsledky
- Katalánština
- Physicochemical parameters
V1 - Objem použitý k titraci vzorků standardním roztokem kyseliny chloristé v mililitrech (ml).
Vo - Objem použitý pro titrační slepý pokus se standardním roztokem kyseliny chloristé v mililitrech (ml);
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Adresa: č. 147 Čching-pchu Road, město Šouan, okres Pchu-ťiang, město Čcheng-tu, provincie S'-čchuan, Čína
Telefon: 86-18880477902
Produkty
Anorganické stopové minerály
- Organické stopové minerály
- svahilština
- Služby na míru
- Rychlé odkazy
Profil společnosti
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gudžarátština | Klikněte pro dotaz | © Copyright - 2010-2025: Všechna práva vyhrazena. | Mapa stránek NEJLEPŠÍ VYHLEDÁVÁNÍ Telefon |
| Tel. | 86-18880477902 | jávština | E-mail |
| 8618880477902 | čínština | francouzština | |
| Bird | čínština | francouzština | Němec španělština |
| Aquatic animals | japonský | korejština | arabština řecký |
| turečtina | italština | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | indonéština afrikánština švédský |
polština
- baskičtina
- Katalánština
- Physicochemical parameters
hindština
Laoština
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Šónština
bulharský
- Cebuánština
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- chorvatský
holandský
| Application object | Urdu vietnamština | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gudžarátština | haitský | Hauština | kiňarwandština Hmongové maďarský |
| Piglets and fattening pigs | Igboština | jávština | Kannadština Khmerština kurdština |
| Kyrgyzština | latinský | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | Makedonština Malajština Malajálamština |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
Norština
- Paštština
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
srbština
Sesotho
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Šónština
Sindhština
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
svahilština
Tádžický
Tamilština
Telugština
Thajština
| Application object | Urdu vietnamština | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| jidiš | Jorubština | Zuluština | kiňarwandština Urijština Turkmenština |
| Ujgurština | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1,52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
